Взятие крови у мелких грызунов с использованием MICROVETTE®

Авторы материала: Forsoksdyrveterinærtjeneste Laboratory Animal Veterinary Services Vivarium, ВИВАРИЙ ИНСТИТУТА В БЕРГАНЕ , Норвегия. Universitetet i Bergen , 5021-Bergen , NORGE

Перед представлением метода ВЗЯТИЯ КРОВИ ИЗ " SAPHENOUS "(подкожная вена ноги) ВЕНЫ, КАК АЛЬТЕРНАТИВУ ОРБИТАЛЬНОМУ МЕТОДУ( из глазной орбиты мыши) предлагаем Вам ознакомится с изображением ОРБИТАЛЬНОГО МЕТОДА( из глазной орбиты мыши)

Обращаем внимание : retro - orbital collection – проводится только при применении анестезии

Авторство изображения Орбитального метода представлено на WEB картинке.

ВЗЯТИЕ КРОВИ ИЗ " SAPHENOUS "(подкожная вена ноги) ВЕНЫ

Перечень оборудования для взятия крови: Microvette (Микроветте) производства Sarstedt AG&Co, Германия с ускорителем свертывания для получения сыворотки и с Li – гепарином для получения плазмы ( на фото приведена цветовая кодировка по стандарту США ). Объем Microvette не более 300 мкл.

Внимание: пробирка 50 мл, используемая для обездвиживания имеет отверстия, которые высверливаются для обеспечения поступления воздуха в контейнер, в который поместят грызуна.

1. Животное помещается в контейнер (пробирку) без анестезии и обездвиживания.

2. Задняя лапка оттягивается и фиксируется на изгибе складки кожи между нижней частью конечности и бедра.

 3.Сейчас лапка зафиксирована и готова к бритью.  4.Шерсть сбривается с использованием скальпеля.
   
 5.Вена saphenous видна на поверхности бедра и показана на фото синими стрелками. Обратите внимание, что лапка фиксируется за кожу между крайней частью бедра и нижней частью лапки. 6. Для пунктуации вены используется игла 23 G x 3/4 " (0,6 мм –цветовая кодировка – синяя). В нашем случае, нет необходимости вскрывать вену ланцетом. 
   
 7. Появившуюся каплю забирают в капилляр микроветте, приблизительно 100 мкл в зависимости от размера мыши  8. Стекающая кровь забирается капилляром микроветте. Скорость стекания крови возможно оптимизировать с помощью обработки поверхности кожи силиконовой смазкой.. Этот способ используется в случае проведения в течение дня нескольких заборов крови, для предотвращения образования корочки на одном месте.
Микроветте отводится в стороны, далее лапка фиксируется в положении, замедляющем ток крови в точке пунктуации.
Микроветте закрывается штатным колпачком. Помните, что мышь ещё находится в контейнере
   
9. Микроветте отводится в стороны, далее лапка фиксируется в положении, замедляющем ток крови в точке пунктуации. 10. Микроветте закрывается штатным колпачком. Помните, что мышь ещё находится в контейнере.
11. Открытая часть микроветте закрывается штатной крышкой. 12. Взятая проба крови помещается в контейнер, входящий в комплект микроветте. Размеры микроветте в сборе соответствуют общепринятым стандартам для микропробирок объёмом 1,5 – 2,0 мл и пригодны для центрифугирования.
13. Микроветте с пробой крови готов для последующих действий. 14. Ватный или марлевый тампон прикладывается к точке пункции и кровотечение останавливается. Вскоре формируется корочка . Она удаляется для проведения повторного забора крови с этого места. Это место может быть использовано несколько раз в течение дневной процедуры.
15. Компресс удерживается до полной остановки крови , затем мышь возвращается в клетку. 16. Также кровь можно забирать из другой лапки. С противоположной стороны ( в данном случае правой) используется складка кожи между брюшком и черепом, бедро используется для фиксации лапки.
17. Задняя часть зафиксирована как и в первом случае и боковая поверхность лапки готова к бритью. 18. Лапка находится в правильном положении и готова к дальнейшим действиям.

 

Эта методика была представлена :the Laboratory Animal Centre of the Norwegian Institute of Public Health by Annelise Hem and Per Solberg. Методика далее развита :the Norwegian Resource Group for Laboratory Animal Science, включая Adrian Smith, Laboratory Animal Unit , Norwegian School of Veterinary Science and Richard T. Fosse, University of Bergen .  Методика опубликована в Laboratory Animals :Hem A, Smith AJ & Solberg P (1998): Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guineapig, ferret and mink. Laboratory Animals 32: 364-368 Фотографирование этого метода проведено в Bergen and shows modifications developed at the Vivarium of the University of Bergen . Web картинки подготовлены при помощи : the Department Of Comparative Medicine, Medical University of South Carolina. При использовании этого материала необходимо ссылаться на авторов этого метода.

НАША ГРУППА КОМПАНИЙ 
BioTestLabVetfactorVeteco

callback (заказать обратный звонок)

Ваше имя 
Телефон 
Пожалуйста, введите код: bklr Защита от спама